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    钙离子对仙草胶-鱼糜凝胶特性和体外消化性的影响

    时间:2023-01-13 16:50:07 来源:天一资源网 本文已影响 天一资源网手机站

    游 刚,张自然,李 莹,牛改改

    (北部湾大学食品工程学院,广西高校北部湾特色海产品资源开发与高值化利用重点实验室,钦州市特色果蔬发酵重点实验室,广西钦州 535011)

    鱼糜制品是一种低脂肪、高蛋白食品,备受消费者喜爱。随着生活质量的不断改善,消费者更加追求食品感官享受,更加注重食品营养和健康。为丰富食品质地和营养以满足消费者对鱼糜制品多元化需求,研究者向鱼糜中添加多糖、Ca等外源物质,以改善鱼糜凝胶结构特性和营养功能性。工业生产上,Ca常用于改善鱼糜制品功能特性。研究表明Ca可激活鱼糜中内源转谷酰胺酶活性,也可与蛋白质以离子键形式形成钙桥结构,进而增强鱼糜凝胶特性。仙草胶(hsian-tsao gum,HG)的主要成分是一种从药食两用草本植物仙草(又称凉粉草)中提取的阴离子杂多糖,具有良好的生物活性(抗氧化性、降血脂等活性)和促凝胶性。前期研究发现,HG可改善鱼糜凝胶感官特性和质构特性,归因于HG -鱼糜蛋白相互作用,促进鱼糜凝胶作用力形成(氢键、疏水作用力和二硫键);
    另外,Ca与HG富含的糖醛酸-COOH结合形成钙桥结构,促进HG凝胶化。在此基础上,发现添加适量Ca可改善HG-鱼糜凝胶质构特性,推测与HG-Ca-鱼糜蛋白质相互作用有关,然而,Ca对HG-鱼糜凝胶特性的影响规律尚不清晰。因此,本实验以HG-鱼糜为研究对象,探讨添加不同浓度Ca对HG-鱼糜复合凝胶感官特性、凝胶特性(凝胶强度、质构特性、凝胶形成作用力、微观结构)和体外消化性的影响,为Ca在HG-鱼糜凝胶产品中的应用提供理论参考。

    1.1 材料与仪器

    罗非鱼(约1.0 kg)、干仙草 广西钦州市东风市场;
    牛血清蛋白(生化试剂) 上海源叶生物科技有限公司;
    胃蛋白酶(3000 U/mg)、胰蛋白酶(250 U/mg)西安拉维亚生物科技有限公司;
    浓盐酸、氢氧化钠、无水乙醇、硫酸铜、酒石酸钾钠、牛血清蛋白、十二烷基硫酸钠SDS、三氯乙酸TCA、尿素、-巯基乙醇 分析纯, 国药集团化学试剂有限公司。

    FJ-200型组织捣碎机 上海样品和模型厂;
    CT3质构仪 美国Brookfield公司;
    KN580全自动凯氏定氮仪 济南阿尔瓦仪器有限公司;
    Evolution-201紫外分光光度计 赛默飞世尔科技(中国)有限公司;
    BX53荧光显微镜 日本Olympus公司。

    1.2 实验方法

    1.2.1 样品制备 参考LIN等的方法制备仙草胶HG,并稍作修改。100 g干草加入1 L 95%(v/v)乙醇浸泡10 h,干燥后加入2 L 0.14 mol/L NaHCO溶液,95 ℃回流提取120 min,分离收集上清液,加入无水乙醇至 80%(v/v)于 4 ℃ 过夜,离心(5000×g,10 min),沉淀复溶、透析(8000~14000 Da),冻干备用。基本成分(g/100 g,干基):多糖 48.81±1.23,蛋白质 9.55±0.35,脂肪 3.86±0.15,灰分 17.54±0.65。

    采用二段加热法(40 ℃,30 min;
    90 ℃,20 min)制备含不同Ca浓度的仙草胶-鱼糜复合凝胶。鱼肉经去皮、骨后,加盐(2.0%,w/w)搅拌(1800 r/min)3 min,加入0.15%(w/w)HG 和 CaCl(0、3、6、9、12 mmol/kg),调整水分含量至80%,继续搅拌(2500 r/min)4 min,灌肠(直径45 mm),加热,冰浴、冷却后于4 ℃储藏过夜,备用。斩拌过程控制样品温度不超过10 ℃,样品 pH6.9~7.2。

    1.2.2 感官评价 参考文献[10-11],并稍作修改。依据《GB/T 16291.1—2012感官分析 选拔、培训与管理评价员一般导则》,组建感官评价小组,由20~45岁食品专业的5名男性和3名女性组成。评价员先充分熟悉样品特性,并经讨论后,确定反映样品的主要评价指标(弹性、硬度、组织状态、色泽),按表1感官评价标准进行评价。

    表1 感官评价标准Table 1 Sensory evaluation criteria

    1.2.3 持水率测定 样品切成3 mm薄片,质量为w(g),用吸水纸包裹置于离心管,离心(6000×g)10 min,质量为 w(g)。

    1.2.4 凝胶强度测定 参考文献[1],样品切成直径20 mm×高25 mm大小的圆柱体,采用质构仪测定。

    1.2.5 全质构(TPA)测定 参考文献[1],样品切成直径20 mm×高25 mm大小的圆柱体,采用质构仪测定。

    1.2.6 凝胶形成作用力测定 参考ZHANG等的方法测定,并稍作修改。称取2.0 g样品,放入10 mL的离心管,分别加入5 mL的SA溶液(0.05 mol/L NaCl)、SB 溶液(0.6 mol/L NaCl)、SC 溶液(0.6 mol/L NaCl+1.5 mol/L尿素)、SD溶液(0.6 mol/L NaCl+8.0 mol/L尿素)和SE溶液(0.6 mol/L NaCl+8.0 mol/L尿素+0.5 mol/L-巯基乙醇)混合均质(1600 r/min)30 s,置于4 ℃的冰柜中静置1 h,然后经5000 r/min的转速下进行离心10 min,采用Lowry法测定蛋白质浓度。凝胶形成作用力采用溶解于不同溶剂的蛋白质浓度差表示:离子键=SB-SA;
    氢键=SC-SB;
    疏水作用力=SD-SC;
    二硫键=SE-SD。

    1.2.7 凝胶溶解率测定 参考BALANGE等方法测定,并稍作修改。取1.0 g样品加入20 mL 20 mmol/L Tris-HCl(含 1% SDS,2%-巯基乙醇和8.0 mol/L尿素)均质,煮沸2 min,室温振荡4 h,离心(10000 r/min,30 min),取上清液 10 mL,添加50% TCA(w/v)至终浓度为10%,于4 ℃过夜,离心(10000 r/min,30 min),用 10%(w/v)TCA 冲洗沉淀,溶解于0.5 mol/L NaOH,采用Lowry法测定蛋白质浓度。样品溶解率=溶解于溶剂中的蛋白质含量/总蛋白质含量(直接溶解于0.5 mol/L NaOH溶液)。

    1.2.8 凝胶微观结构 参考文献[1, 14],采用光学显微镜观察经1%溴酚蓝染色凝胶结构并用ImageJ 1.53软件处理计算其孔隙率。

    1.2.9 凝胶体外消化率测定 参考文献[1, 15]测定。取1.0 g样品(干基)加入25 mL去离子水,10000×g均质1 min,备用。胃蛋白酶消化实验:用1 mol/L HCl将样品调至pH2.0,根据样品质量,以1:30加入胃蛋白酶(3000 U/mg),37 ℃ 振荡消化2 h,用1 mol/L NaOH调pH至8.0灭酶(胰蛋白酶最适pH),离心(10000g,20 min),沉淀冻干,备用;
    胰蛋白酶消化实验:相同步骤完成胃蛋白酶消化,以1:40添加胰蛋白酶(250 U/mg),37 ℃ 下振荡消化 2 h,离心(10000×g,20 min),沉淀冻干,备用。采用凯式定氮法测定蛋白质含量,体外消化率计算如下(以干基计算):

    式中:W:消化前蛋白质含量(mg/g 样品),W:消化后蛋白质含量(mg/g样品)。

    1.3 数据处理

    采用SPSS 19.0软件对3次重复实验据统计分析,结果采用平均值±标准偏差表示,采用 Duncan多重检验进行显著性分析(<0.05),Origin 2021作图并进行主成分分析。

    2.1 Ca2+对HG-鱼糜凝胶感官特性的影响

    添加不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶感官特性的影响如图1所示。与未添加组相比,随着Ca浓度的增大,凝胶弹性、硬度和组织状态评分均呈现先增大后减小的趋势,且均在添加3 mmol/kg Ca时达到最大值;
    凝胶色泽评分呈现逐渐增大的趋势。结果表明添加Ca对HG-鱼糜凝胶感官特性具有显著影响(<0.05),这可能与 Ca参与 HG-鱼糜凝胶网络结构的形成,改变凝胶质构特性和微观结构有关。

    图1 不同浓度Ca2+对仙草胶-鱼糜凝胶感官特性的影响Fig.1 Effects of different concentration of Ca2+ on sensory properties of HG-added surimi gels

    2.2 Ca2+对HG-鱼糜凝胶持水率的影响

    不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶持水率的影响如图2所示。凝胶持水率随Ca浓度的增加先升高后降低;
    与未添加组(91.01%)相比,添加3和6 mmol/kg Ca时,凝胶持水率分别增加1.10%和降低3.30%;
    然而,添加9和12 mmol/kg Ca时,凝胶持水率分别显著降低至86.10%和83.04%(<0.05)。这与加入CaCl的盐析作用增强有关,导致蛋白质聚集速率增大,凝胶结构形成较大且不均匀的孔洞(图5),进而降低其持水率。暴伊芮等研究发现高浓度Ca降低海鲈鱼糜持水率,与本研究结果相似。前期研究发现,加入的阴离子多糖HG能够与蛋白质相互作用,形成紧密均匀的凝胶结构,提高了鱼糜凝胶的持水性;
    然而加入低浓度Ca(≤6 mmol/kg)并未显著增加HG-鱼糜凝胶持水率,与文献报道结果不同,分析其原因可能是由于HG影响Ca-蛋白质相互作用。由于Ca可同时促进HG和蛋白质聚集,进而减弱了HG-蛋白质的相互作用,增大了凝胶网络结构孔洞体积(图5),降低了其持水率。

    图2 不同浓度Ca2+对仙草胶-鱼糜凝胶持水率的影响Fig.2 Effects of different concentration of Ca2+ on waterholding capacity of HG-added surimi gels

    图5 不同浓度Ca2+对HG-鱼糜凝胶微观结构的影响Fig.5 Effects of different concentration of Ca2+ on the microstructure of HG-added surimi gel

    2.3 Ca2+对HG-鱼糜凝胶强度的影响

    不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶强度的影响如图3所示。随着Ca浓度增大,HG-鱼糜凝胶强度呈现先增大后减小的趋势,添加3 mmol/kg Ca时凝胶强度最大,较未添加组显著增加了28.18%(<0.05);
    继续增大Ca浓度至6和9 mmol/kg时凝胶强度均降低,较未添加组分别显著增加了14.34%和9.24%(<0.05);
    然而,Ca浓度增大至 12 mmol/kg 时凝胶强度较未添加组显著减少6.06%(<0.05)。低浓度Ca增大鱼糜凝胶强度的原因如下:a.Ca激活鱼肉内源性酶(转谷氨酸酰胺酶)活性,催化肌球蛋白分子重链共价交联,增大凝胶强度;
    b.低浓度Ca形成的盐溶效应有利于蛋白质结构伸展,内部活性基团暴露,有利于增强相互作用力,例如:疏水作用力和二硫键等,进而增大凝胶强度;
    c.Ca促进仙草胶凝胶化,可有效填充鱼糜凝胶网络,增大凝胶强度。然而,高浓度Ca减小鱼糜凝胶强度归因于:a.转谷氨酸酰胺酶催化活性降低;
    b.盐析作用诱导的蛋白质快速聚集形成不均一的网络结构。暴伊芮等研究发现低浓度Ca增加海鲈鱼糜凝胶强度,高浓度Ca降低其凝胶强度,与本研究结果相似。因此,添加低浓度Ca,特别是添加3 mmol/kg Ca可显著提高HG-鱼糜凝胶强度。

    图3 不同浓度Ca2+对仙草胶-鱼糜凝胶强度的影响Fig.3 Effects of different concentration of Ca2+ on gel strength of HG-added surimi gels

    2.4 Ca2+对HG-鱼糜凝胶质构特性的影响

    不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶质构特性的影响如表2所示。增大Ca浓度可改变HG-鱼糜凝胶的硬度和弹性,均呈现先增加后减小的趋势,且在添加3 mmol/kg Ca时均达最大值,较未添加组分别增加7.65%和0.41%,而凝胶内聚性和咀嚼性变化不明显。暴伊芮等发现添加Ca可增大鱼糜凝胶硬度;
    鲍佳彤等发现添加0.4% TGase时,增大Ca浓度,糜凝胶硬度和弹性先增大后降低;
    结果表明鱼糜凝胶网络结构的形成与Ca-内源性酶(TGase)-蛋白质相互作用有关。前期研究发现HG-鱼糜蛋白质存在相互作用,据此推测HG-鱼糜蛋白相互作用影响Ca-内源性酶(TGase)-蛋白质相互作用,进而改变凝胶硬度。此外,HG-鱼糜凝胶硬度变化趋势与凝胶强度变化结果(图3)一致,表明低浓度Ca可促进HG-鱼糜凝胶网络结构形成,增大凝胶强度和硬度。

    表2 不同浓度Ca2+对HG-鱼糜凝胶质构特性的影响Table 2 Effects of different concentration of Ca2+ on texture properties of HG-added surimi gels

    2.5 Ca2+对HG-鱼糜凝胶形成作用力和溶解率的影响

    蛋白凝胶经不同溶剂溶解后可溶性蛋白质浓度的变化,可间接反映凝胶形成过程中分子间作用力的变化。不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶可溶性蛋白质浓度的影响如图4a所示。与未添加组相比,添加Ca显著降低二硫键、离子键和氢键作用力,显著增大疏水作用力(<0.05),表明 Ca影响 HG-鱼糜蛋白相互作用。尽管添加3 mmol/kg Ca时其二硫键含量较未添加组降低,但其疏水作用力显著增加(<0.05),且凝胶强度、硬度和弹性均达最大值;
    继续增加Ca浓度,其凝胶二硫键、氢键和疏水作用力均显著降低(<0.05),且凝胶强度(图3)、硬度和弹性(表2)均降低,由此可推测二硫键、氢键和疏水作用力变化对凝胶质构特性产生一定影响。二硫键含量与蛋白质含硫氨基酸残基数量有关;
    Ca-蛋白质相互作用阻碍蛋白质分子链交联,减弱二硫键作用。凝胶形成疏水作用力增强归因于Ca-HG-蛋白质相互作用促使蛋白质结构伸展,暴露更多的疏水性基团,促进蛋白质聚集。另外,随着Ca浓度增大,其氢键作用力逐渐减小,归因于Ca水化以及Ca促进HG凝胶化,均与鱼糜蛋白竞争性结合水分,减弱了蛋白质-水之间的氢键作用力,增强蛋白质表面疏水性环境。氢键作用力变化与图2显示的凝胶持水率变化结果一致,表明氢键作用力与凝胶持水性具有一定程度上的正相关性。随着Ca浓度增大,离子键作用力逐渐减小,表明鱼糜凝胶化过程中蛋白质结构被破坏,受添加物(Ca、HG)和温度等因素的影响。

    由于含SDS、尿素和-巯基乙醇的溶剂不能断裂非二硫共价键,例如-(-Glu)-Lys 共价键,因此,利用该溶剂溶解鱼糜,其溶解率越低,表明鱼糜凝胶中非二硫共价键含量越高。不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶溶解率的影响如图4b所示。随着Ca浓度增大,HG-鱼糜凝胶溶解率呈现先降低后升高的趋势;
    添加3 mmol/kg Ca时凝胶溶解率最低,较未添加组降低46.15%;
    尽管继续增加Ca浓度,凝胶溶解率增大,但较未添加组均显著降低(<0.05)。结果表明添加Ca可促进凝胶非二硫共价键的形成。图4a显示,添加3、6、9 mmol/kg Ca时凝胶二硫键含量较未添加组显著降低(<0.05),但图3显示其凝胶强度较未添加组显著增大(<0.05),表明非二硫共价键对凝胶强度贡献较大;
    特别是添加3 mmol/kg Ca时的凝胶强度(图3)、硬度和弹性(表2)均达最大值与其较大非二硫共价键含量有关。然而,添加12 mmol/kg Ca时凝胶溶解率较未添加组显著降低,同时其凝胶强度和硬度均显著降低,表明二硫键和非二硫共价键含量对凝胶质构特性具有决定性影响。因此,添加低浓度Ca可增加凝胶形成疏水作用力和非二硫共价键含量,改善HG-鱼糜凝胶特性。

    图4 不同浓度Ca2+对仙草胶-鱼糜凝胶形成作用力(a)和凝胶溶解率(b)的影响Fig.4 Effects of different concentration of Ca2+ on the intermolecular forces (a) and solubility (b) of HG-added surimi gels

    2.6 Ca2+对HG-鱼糜凝胶微观结构的影响

    添加不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶微观结构的影响如图5所示。添加Ca影响HG-鱼糜凝胶形成作用力,进而改变凝胶结构,其孔隙率大小为:18.80%(12 mmol/kg)>13.75%(0)>13.71%(9 mmol/kg)>12.13%(6 mmol/kg)>11.11%(3 mmol/kg)。由于 Ca-HG-蛋白质相互作用,蛋白质-水相互作用减弱,其疏水相互作用力增大;
    此外,体积排空作用促进相邻蛋白质表面聚集形成多孔凝胶网络结构。添加3 mmol/kg Ca时,凝胶强度(图3)、硬度和弹性(表2)最大与HG-鱼糜凝胶孔隙率较低有关。因此,添加低浓度Ca可促进HG-鱼糜凝胶网络结构形成,改善凝胶质构特性。

    2.7 Ca2+对HG-鱼糜凝胶体外消化性的影响

    采用体外消化模型,分析不同浓度Ca对HG-鱼糜凝胶体外消化性的影响,结果如图6所示。随着Ca浓度增大,样品分别经胃蛋白酶、胃蛋白酶+胰蛋白酶消化后,样品消化率均呈现先减小后增加的变化趋势,且经胃蛋白酶+胰蛋白酶消化后的HG-鱼糜凝胶消化率高于胃蛋白酶组。由于添加Ca影响复合鱼糜凝胶强度、硬度、弹性和溶解率,改变凝胶形成作用力(图4a)和微观结构(图5),进而影响凝胶的体外消化率。添加3 mmol/kg Ca时凝胶消化率最低与其较低的溶解率(图4b)和较高的凝胶强度(图3)、硬度(表2)有关,这与SEMEDO等报道的蛋白质消化性与硬度呈现显著负相关性结论一致;
    另外,较低凝胶消化率与凝胶形成较少孔隙率的网络结构有关(图5),紧密的网络结构对酶-蛋白质结合产生一定位阻作用。继续增加Ca浓度,凝胶样品体外消化率显著增加,且在9 mmol/kg Ca后显著高于未添加组(<0.05),其形成原因如下:a.凝胶溶解率和结构孔隙率增加,多孔结构有利于酶-蛋白质结合;
    且凝胶强度、硬度和弹性均减小,有利于凝胶体外消化;
    b.Ca具有激活酶活性功能,添加一定浓度Ca促进酶解作用,进而提高凝胶消化率。因此,Ca对HG-鱼糜凝胶体外消化率受凝胶结构孔隙率和质构特性变化影响。

    图6 不同浓度Ca2+对HG-鱼糜凝胶体外消化率的影响Fig.6 Effects of different concentration of Ca2+ on the digestibility of HG-added surimi gel in vitro

    2.8 凝胶特性、感官特性与体外消化性相关性分析

    由图7可知,经主成分分析(PCA),PC1和PC2的总贡献率超过85%,表明PCA能较好反映原始高维矩阵数据信息。样品出现在3个不同区域,可将样品聚类为 3组(Ca-0;
    Ca-3和 Ca-6;
    Ca-9和Ca-12),表明添加 Ca显著影响 HG-鱼糜凝胶特性。凝胶感官特性(硬度-SC、弹性-SC和组织状态-SC)与凝胶质构特性(硬度、弹性)、凝胶形成作用力(二硫键、氢键和离子键)和持水率呈正相关性。凝胶消化率与微观结构孔隙率和凝胶溶解率呈正相关性,与凝胶强度、硬度、弹性、持水率和凝胶形成作用力(二硫键、离子键、氢键)呈负相关性。

    图7 HG-鱼糜复合凝胶特性和消化率之间的PCA双标图Fig.7 PCA biplot among gel properties and digestibility of HG-added surimi gel

    添加Ca减少HG-鱼糜凝胶二硫键、离子键和氢键作用力,增加其疏水作用力和非二硫共价键含量,进而影响凝胶持水率、凝胶特性(凝胶强度、硬度和弹性)和结构孔隙率。添加3 mmol/kg Ca可改善HG-鱼糜凝胶感官特性(弹性、硬度和组织状态)、凝胶强度、质构特性(硬度、弹性)和持水率,微观结构紧密,孔隙率较小,但凝胶溶解率和体外消化率降低;
    继续增加 Ca浓度(>3 mmol/kg),HG-鱼糜凝胶感官特性、凝胶强度、质构特性(硬度、弹性)和持水率均降低,微观结构孔隙率增大,但凝胶溶解率和体外消化率增加。经主成分分析,凝胶消化率与结构孔隙率和凝胶溶解率呈正相关性,与凝胶强度、硬度、弹性、持水率和凝胶形成作用力(二硫键、离子键、氢键)呈负相关性。因此,添加低浓度Ca可改善HG-鱼糜凝胶感官特性和凝胶结构特性,改变Ca浓度可设计不同感官特性和凝胶特性的HG-鱼糜凝胶,具有潜在的应用价值。后续实验将进一步从Ca-HG-蛋白质/内源酶相互作用角度分析Ca对复合凝胶结构特性的影响机制,为HG-鱼糜凝胶产品多元化开发提供理论参考。

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